هدف: ارایه یک روش نوین برای بررسی حیات اسپرممواد و روشها: نمونه های اسپرمی در محیط Ham’s F-10 + 10% HSA به مدت 10 دقیه در دور 2500 شستشو داده شد و سپس آزمونهای (E&N) Eosin-nigrosin، Hypo-osmotic Swelling Test (HOST) و (3-(4.5-dimethyl thiasol-2yl)2.5 diphenyl terazolium bromide) mtt assay به طور همزمان روی هر یک از نمونه ها انجام شد. نمونه های اسپرمی در محیطهای مختلف با mtt مجاور شده و تاثیر محیطهای مختلف، pH محیط و زمان مورد بررسی قرار گرفت. سپس ضریب واریانس در روش mtt محاسبه و پس از به دست آوردن میزان اعتبار mtt با آزمونهای HOST و E&N مقایسه شد. در نهایت حساسیت و اختصاصی بودن این سه روش بررسی شد.یافته ها: مناسبترین محیط برای mtt، Ham’s F-10+ 15mM Hepes+ 10% HSA در 7.4=pH و زمان 2 ساعت تعیین شد. سپس ضریب همبستگی معنی دار و بالایی بین آزمونهای mtt و HOST و E&N به دست آمد و نشان داده شد که هر سه روش از میزان حساسیت و اختصاصی بودن بالایی برخوردار هستند ولی درصد اختصاصی بودن روشهای mtt و E&N از HOST بالاتر بود.نتیجه گیری: آزمون mtt به عنوان یک روش مناسب برای تشخیص، تفکیک و جدا نمودن اسپرمهای زنده از اسپرم مرده شناخته شد. استفاده از این روش در تشخیص و تفکیک اسپرمهای زنده بدون حرکت در روش درمانی ICSI پیشنهاد می گردد.

کشت قطعات نخاع پستانداران یکی از تکنیکهای مهم برای مطالعه آسیبهای نخاع، ارزیابی قابلیت حیات و همچنین مکانیسمهای دخیل در مرگ سلولی می باشد. هدف از این پژوهش با تاکید بر ایجاد یک مدل آزمایشگاهی (in vitro) رای کشت قطعات نخاع، ارزیابی قابلیت حیات قطعات تازه تهیه شده و قطعات کشت شده نخاع با استفاده از سنجش5 – dipheny1 tetrazolium bromide)] ، [thiazol – 2 – y1 (- 2است. در این تحقیق، ناحیه سینه ایی نخاع موشهای بالغ به وسیله دستگاه قطعه کننده بافت (tissue chopper) به طور عرضی به قطعات 300 تا 600 میکرونی بریده شد. این قطعات به دو محیط کشت مختلف (واجد سرم و فاقد سرم) انتقال یافت و برای زمانهای مختلف انکوبه شدند. سپس با استفاده از روش mtt قابلیت حیات آنها سنجش گردید. نتایج نشان داد که پس از 24 ساعت، قطعات کشت شده 400 میکرونی به طور معنی داری (P<0.01) قابلیت حیات بیشتری را نسبت به قطعات نازکتر و ضخیم تر نشان دادند. همچنین در این زمان، قطعات کشت شده در محیط واجد سرم افزایش معنی داری (P<0.001) را در قابلیت حیات نسبت به قطعات مشابه در محیط کشت فاقد سرم نشان دادند. نتایج حاصل از سنجش کیفی mtt همچنین بیانگر شدت رنگ در ماده خاکستری و سفید در قطعات تازه تهیه شده (لحظه صفر) بود، در حالی که بعد از گذشت 24 ساعت شدت رنگ در این قطعات و بخصوص در قطعات کشت شده در محیط فاقد سرم کاهش یافت. نتایج حاضر پیشنهاد می کند که سنجش mtt یک روش مفید برای ارزیابی قابلیت حیات قطعات نخاع موش بالغ است و علاوه بر آن ضخامت قطعات و حضور سرم در محیط کشت می توانند قابلیت حیات این قطعات را مورد تاثیر قرار دهند.

زمینه و هدف: در سال های اخیر شیوع بیماری های قارچ های فرصت طلب افزایش چشم گیری یافته است. کاندیدا دابلینسیس یکی از پاتوژن های قارچی معمول کلونیزاسیون و تشکیل بیوفیلم بر روی سطوح و وسایل پزشکی است. هدف از این مطالعه، ارزیابی فعالیت مهاری نانوذره اکسید روی بر علیه تشکیل بیوفیلم توسط کاندیدا دابلینسیس با روش رنگ سنجی mtt می باشد.روش بررسی: در این بررسی نانوذره اکسید روی با استفاده از روش سل - ژل تهیه گردید، اندازه و نوع ذرات به ترتیب به وسیله میکروسکوپ الکترونی روبشی (SEM) و پراش اشعه ایکس(XRD)  تعیین شدند. حداقل غلظت مهارکنندگی از رشد با روش میکروبراث دایلوشن انجام شد. بیوفیلم کاندیدا دابلینسیس (DSY 1024) بعد از 48 ساعت انکوباسیون در دمای 37 درجه سانتی گراد تشکیل و اثر بازدارندگی نانوذره ZnO، SDS و داروی فلوکونازول به عنوان کنترل مثبت بر روی بیوفیلم کاندیدا توسط احیای نمک تترازولیوم mtt ارزیابی شد. داده های جمع آوری شده با استفاده از آزمون آماری t-test و نرم افزار SPSS تحلیل شد.یافته ها: نتایج حاصل از این بررسی نشان می دهد که حداقل غلظت مهارکننده نانوذره ZnO،SDS  و فلوکونازول به ترتیب: 9.25، 80.02 میکروگرم بر میلی لیتر بودند. قدرت مهارکنندگی چسبندگی بیوفیلم در حضور نانوذره ZnO،SDS  و فلوکونازول، معادل بیش از دو برابر غلظت  MICبرای مهار رشد بیوفیلم کاندیدا دابلینسیس تعیین گردید.نتیجه گیری: در این مطالعه، سنتز نانوذرهZnO  با روش شیمیایی نشان داد که دارای خاصیت ضد قارچی است. از این رو، می تواند راه کاری جدید جهت پیش گیری از تشکیل بیوفیلم کاندیدا به ویژه بیوفیلم های مرتبط با ابزارهای پزشکی باشد.

تحقیقات قبلی نشان داده است که روش ارزیابی حیاتی اسپرم توسط mtt، روشی مناسب برای تشخیص اسپرم های زنده از غیرزنده می باشد. در این روش نمونه اسپرمی در مجاورت mtt قرار گرفته و mtt توسط آنزیم دهیدروژناز میتوکندری اسپرم های زنده در ناحیه قطعه میانی به رنگدانه بنفشmtt Formazan  تبدیل می شود. با توجه به مشاهده مستقیم دانه های تشکیل شده، می توان از این روش در تفکیک اسپرم های زنده توسط سوزن میکرواینجکشن و تزریق آنها به داخل تخمک استفاده کرد. هدف از این مطالعه بررسی تاثیر روش ارزیابی حیاتی اسپرم توسط mtt برروی لقاح، تسهیم و تشکیل بلاستوسیست می باشد. لذا تعداد 109 عدد تخمک های انسانی که در متافاز II قرار داشتند به دو گروه تقسیم شد. یک گروه توسط اسپرم‎های mtt مثبت و یک گروه هم توسط بخش دیگری از همان نمونه اسپرمی بدون مجاورت با mtt تزریق شدند. مقایسه نتایج بین دو گروه مورد (آزمون) و گروه کنترل نشان داد که تفاوت معنی داری بین درصد لقاح، تسهیم و بلاستوسیست، در هر دو گروه وجود ندارد. لذا در صورتی که بتوان ثابت کرد که روش ارزیابی حیاتی اسپرم توسط mtt تاثیرات میتوژنیک یا تراتوژنیک ندارد، می توان از این روش برای درمان به روش ICSI به خصوص در بیماران آستنواسپرمی دارای اختلالات ناحیه دم اسپرم سود جست.